规格及成分
本产品使用小扁盒包装
成分
编号
规格
包装
谷胱甘肽-琼脂糖溶液,50%
220227a
4 mL
5 mL 本色瓶
10×PBS 缓冲液
220227b
100 mL 125 mL本色瓶
GST 标签蛋白纯化溶液 A
220227c
1 mL
1.5 mL 蓝盖管
GST 洗脱缓冲液成分一
220227d1
25 mL
30 mL 本色瓶
GST 洗脱缓冲液成分二
220227d2
80 mg
0.5 mL 棕色管
溶菌酶,20 KU/mg
210808
30 mg
0.5 mL 棕色管
Benzonase 溶液,1 U/L
220969
100 L 0.5 mL 红盖管
PMSF 溶液,10 mg/mL
6-2628
1 mL
1.5 mL 白盖管
6 mL 层析柱(带筛板)
11-231103
1 套
塑料袋
使用手册
220227sc
1 份
1 份
运输及保存 常温运输和保存,谷胱甘肽-琼脂糖溶液,GST 洗脱缓冲液成分二,溶菌酶,20 KU/mg 需
常温运输 4℃保存,Benzonase 溶液,1 U/L 和 PMSF 溶液,10 mg/mL 需低温运输,
-20℃保存。有效期一年
自备试剂
超纯水
使用方法 一:重组蛋白的表达和细菌收集
1. 37℃振荡培养 20 mL 含表达质粒的细菌到 OD600=0.6-0.8。
2. 加 IPTG 到终浓度为 0.1 mM,30℃振荡培养 3 小时或 22℃振荡培养 8 小时(或过夜)。
3. 4℃ 5000×g 离心 10 分钟收集 20 mL 表达菌液,弃上清。
4. 用 1×PBS 缓冲液重悬细菌沉淀,4℃ 5000 g 离心 10 分钟,弃上清。沉淀可直接用于裂解或放-80℃保存。1×PBS 缓冲液可用自备的超纯水稀释本试剂盒提供的 10×
PBS 缓冲液而得。PBS 缓冲液极其容易长细菌,注意防止污染。
二:细胞裂解
5. 如果用超声波破碎细胞,先用 1 mL 冰浴的新鲜配制的细胞裂解液重悬细菌沉淀(细胞
裂解液的配制方法:在 1 mL 1×PBS 缓冲液中加入 50 L 溶液 A 和 50 L 10 mg/mL
的 PMSF 溶液,混匀即可)。冰上超声裂解重悬菌体直到在显微镜下看见绝大多数细胞
破裂。超声参数需根据仪器型号自行摸索,一般选 1K-10K 频率处理 15 次,每次 20
秒,间隔 1 分钟(必需放置在冰上)。裂解物不能粘稠,否则会堵塞层析柱。
6. 如果用酶法破裂细胞,则在 1 mL 冰浴的、新鲜配制的细胞裂解液重悬细菌(细胞裂解
液配制方法:在 1 mL 1×PBS 缓冲液中加入 1.5 mg 溶菌酶干粉、50 L10 mg/mL
的 PMSF 溶液和 5 L Benzonase 溶液,混匀即可)。将重悬细菌冰上放置 30 分钟,
得到细菌裂解物。
7. 将超声或酶法得到的细胞裂解物在 13000×g 4℃离心 10 分钟去除未裂解细胞和裂解
细胞碎片以防堵柱,所得上清即含可溶性 GST 标记蛋白。预留少量(如 100 L)作为
裂解液留样,其余用于第 10 步的过柱。
三:层析柱的制备和 GST 蛋白纯化
8. 摇晃将 4 mL 谷胱甘肽-琼脂糖介质充分混匀后,全部加入到预放了一片筛板的层析柱中
(介质的最低用量需要根据 GST 蛋白产量决定,100 mL 菌液最少需要使用 200 L
介质。此处加 2 mL 则绰绰有余)。下列步骤各溶液的用量均针对 4 mL 介质而定,如
果介质用量不同,各溶液用量需相应调整。
9. 用 40 mL 预冷的 1×PBS 缓冲液洗柱。
10.将第 7 步得到的上清液(含可溶性 GST 标记蛋白)上柱,让重力使上柱液自然流出,
收集并保存穿透液用于 SDS-PAGE 电泳。GST 和谷胱甘肽之间的结合很缓慢,所以流
速一定不能快,否则结合不充分。流速一般在 0.2-1 mL/分钟即可。如要提高 GST 标
记蛋白与介质的结合效率,可用本试剂盒提供的红盖将层析柱下的漏液口堵上,让细菌
裂解液和介质在 4℃结合 30 分钟或过夜。也可以将穿透液反复上柱。
11.用 10 mL 1×PBS 缓冲液洗柱,收集并保存穿透液(含杂蛋白)并预留
100 L 作为穿透液留样,其余在确认实验成功后再丢弃。
12.用 0.2-0.5 mL GST 洗脱液洗柱,收集并保存穿透液,此穿透液即纯化的 GST 标记蛋
白样品。GST 洗脱液的配制方法是将约 80 mg GST 洗脱液成分二干粉全部加入到 GST
洗脱液成分一溶液中,摇晃直到干粉全部溶解即得 GST 洗脱液,分装成小份放-20℃保
存,每次用一管。由于它可能含蛋白酶污染,所以纯化样品不能在 4℃长期放置,需留
100 L 左右用于后续浓度测定或/和 SDS-PAGE 电泳,其余放-80℃长期放置。13.用裂解液留样(第 7 步)、穿透液留样(第 11 步)和纯化样品留样(第 12 步)进行
蛋白定量或/和 SDS-PAGE 分析。注意:本操作没有预先脱盐,故只能用 Bradford 法
或 OD 检测法测定裂解液留样、穿透液留样和样品留样的蛋白浓度。按 OD 检测法,1
OD280 约等于 0.5 mg/mL 蛋白。由于 GST 的分子量为 26 KD,所以在 SDS-PAGE
胶上,GST 标记蛋白将比天然蛋白大 26 KD。
附:GST 柱的恢复(本试剂盒不含所需试剂)
1. 用 3 倍介质体积的 6 M 盐酸胍处理柱子 10 分钟。介质为 2 mL 则用 6 mL,下同。
2. 用 3 倍介质体积的超纯水处理柱子 10 分钟。
3. 用 3 倍介质体积的缓冲液一(0.5 M NaCl,0.1 M TrisHCl,pH 8.5)处理柱子 10
分钟;用 3 倍介质体积的缓冲液二(0.5 M NaCl,0.1 M TrisHCl,pH 4.5)处理柱
子 10 分钟。此步骤重复两次。
4. 用 3 倍介质体积的超纯水处理柱子 3 次。
5. 若需要立即使用,则用 3 倍介质体积的 1×PBS 缓冲液处理柱子 2 次。堵上漏口,加 3
倍介质体积的 1×PBS 缓冲液洗涤后立即使用。
6. 若长时间不用,则上步的 1×PBS 改成 20%的乙醇,其余操作完全相同。
疑难解答 Q:为何 GST 蛋白不与介质结合或结合很弱?
A:可能原因及解决办法:标签蛋白变性(使用温和裂解方法)、标签蛋白聚集(补加 DTT)、
标记蛋白浓度太低(浓缩样品)、标记蛋白改变了 GST 的构型(降低结合时的温度)、结
合时间太短(延长蛋白与吸附柱的结合时间)。
关联产品
His 标记蛋白质微量纯化试剂盒
20
暂无关联商品